食源性微生物MRSA食品安全論文

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1 食品安全與超級(jí)細(xì)菌       

1.1 超級(jí)細(xì)菌

2010 年《柳葉刀》雜志首次報(bào)道南亞的 “超級(jí)細(xì)菌”，該菌攜帶具有泛耐藥性 NDM-1 基因，能對(duì)絕大多數(shù)抗生素耐藥；經(jīng)進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)，英國(guó)衛(wèi)生部和美國(guó)疾控中心均提出攜帶 NDM-1 基因的細(xì)菌具有大范圍傳播和感染能力。目前，NDM-1 耐藥菌在印度腸細(xì)菌感染中達(dá) 1%-3%；在歐洲、非洲和澳大利亞等地亦已有報(bào)道；我國(guó)在 2011 年首次發(fā)現(xiàn)該類耐藥細(xì)菌，可見(jiàn)其感染范圍和感染率呈擴(kuò)增趨勢(shì)。耐藥性不改變致病菌的性狀，但可讓患者在感染后變得無(wú)藥可治。臨床微生物學(xué)傳統(tǒng)定義的“超級(jí)細(xì)菌”包括臨床上出現(xiàn)的多種耐藥菌，如耐甲氧西林金黃色葡萄球菌（MRSA）、抗萬(wàn)古霉素腸球菌（VRE）以及耐多藥肺炎鏈球菌（MDRSP）等。與 NDM-1 耐藥菌相比，這些傳統(tǒng)的“超級(jí)細(xì)菌”檢出率更高，在感染性疾病中更多見(jiàn)；其中，MRSA 是醫(yī)院內(nèi)最常見(jiàn)的病原菌之一，具有高發(fā)病率。據(jù)美國(guó) CDC 統(tǒng)計(jì)，每年約數(shù)十萬(wàn)人因感染 MRSA 而住院治療，院內(nèi)感染的 MRSA 分離率已高達(dá) 80%以上，其多重耐藥的特性不但增加了治療的復(fù)雜性和難度，也增加了抗生素的消耗量和醫(yī)療費(fèi)用。

1.2 耐甲氧西林金黃色葡萄球菌（MRSA）

金黃色葡萄球菌（Staphylococcus aureus）是主要的食源性微生物，由其引起的食品中毒事件在革蘭氏陽(yáng)性菌中高居首位；據(jù)統(tǒng)計(jì)，在美國(guó)，由金葡菌引起的食物中毒占 33%，僅次于大腸桿菌；在 1983-1997 年間，每年約 18.5 萬(wàn)人發(fā)生葡萄球菌中毒，其中 1750 人住院，總醫(yī)療費(fèi)用達(dá) 15 億美元。金葡菌在加拿大占細(xì)菌性食物中毒的 45%，而在某些歐洲國(guó)家如匈牙利、芬蘭等則占 50%以上。在日本，1980-1999 年間共超過(guò)2500 起葡萄球菌中毒報(bào)道，受感染人數(shù)約 6 萬(wàn)人；而 2000 年因污染金葡菌引起的“雪印奶粉”事件則超過(guò) 14000人受感染。在我國(guó)，每年由金黃色葡萄球菌引起的食物中毒事件也是屢見(jiàn)不鮮。金葡菌也是典型的耐藥微生物，是潛在的“超級(jí)細(xì)菌”。1961 年 Jevons 在英國(guó)首次發(fā)現(xiàn)對(duì)甲氧西林耐藥的金葡菌（mrsa），MRSA 在 20 世紀(jì) 60 年代中期擴(kuò)展至歐洲及北美等地區(qū)，逐漸成為世界范圍內(nèi)的主要醫(yī)院獲得性病原體；在 70 年代末急劇增多并遍及全球，其引起的感染性疾病與乙型肝炎，艾滋病同為當(dāng)今世界三大感染頑疾[15,16,19,20]。；而從 90 年代開(kāi)始，MRSA 更突破了以往在醫(yī)院中檢出的局限，進(jìn)一步在社區(qū)中被大量檢出，其菌株與耐藥特點(diǎn)也隨之發(fā)生變化。

1.3 MRSA的耐藥性

MRSA 從首次發(fā)現(xiàn)至今 50 余年中，其耐藥范圍不斷擴(kuò)大，耐藥程度也日益嚴(yán)重。上世紀(jì) 80 年代，慶大霉素是一般治療 MRSA 感染的有效藥物，而目前 MRSA 對(duì)其耐藥率已超過(guò) 50%；同期，MRSA 對(duì)曾經(jīng)的保留用藥氟喹諾酮類藥物高度敏感，但當(dāng)前 80%以上的 MRSA 對(duì)其耐藥。研究發(fā)現(xiàn)，MRSA 耐藥的主要原因是其攜帶的 mecA 基因編碼的一種對(duì) β-內(nèi)酰胺類抗菌藥物具低親和力的青霉素結(jié)合蛋白 PBP2a；mecA 是一個(gè)外源基因，來(lái)自凝固酶陰性葡萄球菌或腸球菌屬，通過(guò)轉(zhuǎn)座子或 R 質(zhì)粒轉(zhuǎn)到原本敏感的金葡菌中，并整合在染色體第 10 節(jié)段上，該基因組島被稱為葡萄球菌染色體盒（SCCmec）。PBP2a 蛋白分子量為 78kD，當(dāng)金葡菌固有的 PBPs 被 β-內(nèi)酰胺類抗菌藥物結(jié)合失活后，PBP2a 能替代其發(fā)揮轉(zhuǎn)肽酶的功能，促進(jìn)細(xì)胞壁合成，從而產(chǎn)生耐藥性[22]。根據(jù)美國(guó)臨床實(shí)驗(yàn)室標(biāo)準(zhǔn)化委員會(huì)（NCCLS）標(biāo)準(zhǔn)，金葡菌在檢出 mecA 基因或者 PBP2a蛋白時(shí)即可定義為 MRSA；但菌株的耐藥程度有所差異，其主要包括兩大類：相對(duì)敏感型菌株和高度耐藥型菌株。在培養(yǎng)基鑒定菌株耐藥時(shí)，為克服表型的異質(zhì)性，傳統(tǒng)方法采用不易降解，MRSA 異質(zhì)性相對(duì)較低的苯唑西林，通過(guò)適當(dāng)培養(yǎng)條件如在 30℃或 35℃培養(yǎng)，提高培養(yǎng)基 NaCl 濃度 ( 2 %～4 %)，強(qiáng)化耐藥性表達(dá)，延長(zhǎng)培養(yǎng)時(shí)間，來(lái)提高準(zhǔn)確性[24]。近年來(lái)，新型耐藥整合子元件在 MRSA 中大量發(fā)現(xiàn)，成為 MRSA 耐藥性發(fā)展的新特點(diǎn)。整合子是一種存在于細(xì)菌質(zhì)粒或染色體上具有移動(dòng)性的基因捕獲和表達(dá)的遺傳單位，在革蘭氏陰性菌中被廣泛報(bào)道，介導(dǎo)對(duì)多種抗生素的耐藥性，成為革蘭氏陰性菌中耐藥性泛濫的主要原因[25-28]。然而在革蘭氏陽(yáng)性菌中一直鮮有報(bào)道。筆者根據(jù)對(duì) 2001 年-2006 年間華南地區(qū)的 MRSA 耐藥性研究表明[5,6,29-32]，第一類整合子在 MRSA 中普遍存在，但分離率低于常見(jiàn)報(bào)道的革蘭氏陰性菌，為 46.6%（122/262），遠(yuǎn)低于常見(jiàn)院內(nèi)感染微生物如銅綠假單胞菌（一般報(bào)道為 80%以上）等；同時(shí)，前期研究顯示，第一類整合子系統(tǒng)存在與否，對(duì)紅霉素、慶大霉素、四環(huán)素和甲氧芐啶-磺胺甲唑等抗生素的耐藥性具有顯著影響。然而，這些抗生素均具有較長(zhǎng)的歷史，并非治療 MRSA 感染的常用藥物，甚至多年前已退出醫(yī)院常用藥物行列。例如，四環(huán)素自 1948 年問(wèn)世至今超過(guò) 60 年，是應(yīng)用最多、最廣泛的廣譜抗菌素；后來(lái)發(fā)現(xiàn)其對(duì)牙齒、指甲與鞏膜等具有嚴(yán)重副作用，隨后在臨床使用中逐漸淘汰。慶大霉素同樣由于具有較大副作用在多年前已退出治療的一線藥物。因此，近年來(lái)流行MRSA 中出現(xiàn)的對(duì)這些抗生素耐藥性可能不由臨床環(huán)境中抗生素選擇壓力所產(chǎn)生?？赡苡捎谶@些藥物在畜牧業(yè)中仍被大量應(yīng)用，因此在 MRSA 中出現(xiàn)的對(duì)這些藥物的耐藥性，這也暗示了畜牧業(yè)中抗生素的濫用造成了微生物在向“超級(jí)細(xì)菌”進(jìn)化，這已經(jīng)成為食品安全中的一個(gè)重要的潛在問(wèn)題。

2 MRSA的檢測(cè)

常規(guī)方法對(duì) MRSA 的檢測(cè)包括：苯唑西林紙片擴(kuò)散法，乳膠凝集試驗(yàn)和苯唑西林瓊脂篩選方法。最近，臨床和實(shí)驗(yàn)室標(biāo)準(zhǔn)化研究所（CLSI）推薦使用的頭孢西丁紙片擴(kuò)散法檢測(cè) MRSA[33]，以及還有一些其他的檢測(cè)方法。常規(guī)培養(yǎng)液檢測(cè)方法通常具有很高靈敏度，但是對(duì)于此方法高的靈敏度伴隨的是檢測(cè)速度相對(duì)比較慢。

2.1 紙片擴(kuò)散法

紙片擴(kuò)散法包括苯唑西林和頭孢西丁紙片擴(kuò)散法，其步驟一般包括制備菌液、接種平板、貼藥敏紙片、培養(yǎng)等。前者把菌株在 1μg 苯唑西林 MH 瓊脂培養(yǎng)基進(jìn)行試驗(yàn)，抑菌圈在 35℃經(jīng)過(guò) 24 小時(shí)培養(yǎng)確定；其抑菌圈大小是根據(jù) CLSI（2008）的標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行判斷:抑菌環(huán)直徑≤10 mm 為耐藥，11-12 mm 為中介，≥13 mm 為敏感；當(dāng)抑菌圈直徑在 11～12 mm 時(shí)判斷為中間，需加做 mecA 或 PBP2a 的檢測(cè)以證實(shí)是否為 MRSA。該方法最大優(yōu)點(diǎn)是快速、簡(jiǎn)便、價(jià)格便宜，易被檢驗(yàn)人員接受。在合適的抗生素、pH、及培養(yǎng)溫度、菌液的濃度、培養(yǎng)基厚度等條件下，該方法檢測(cè) MRSA 是可行的。它對(duì) MRSA 檢出敏感性、特異性較高，仍不失為目前臨床微生物實(shí)驗(yàn)室常規(guī)篩檢 MRSA 方法之一。但由于多種因素的影響，從表型上進(jìn)行診斷，其結(jié)果略欠準(zhǔn)確，致使其特異性低于其他方法。許多研究均發(fā)現(xiàn)頭孢西丁紙片法相比于苯唑西林紙片法具有更好的靈敏度[34-36]。該法把菌株在帶有 30μg 的苯唑西林 MH 瓊脂培養(yǎng)基進(jìn)行試驗(yàn)，抑菌圈是 35℃經(jīng)過(guò) 16-18 小時(shí)培養(yǎng)確定：根據(jù)CLSI（2008）標(biāo)準(zhǔn)：抑菌環(huán)直徑≤21 mm 為耐藥，≥22 mm 為敏感。該方法優(yōu)點(diǎn)同樣是快速、簡(jiǎn)便、價(jià)格便宜，并且靈敏度高于苯唑西林紙片法。Priya Datta[32]等發(fā)現(xiàn)，頭孢西丁的紙片法具有 98.5％的靈敏度和 100%的特異性，而苯唑西林紙片法的是 91.4%的靈敏度和 99.2%的特異性。但是作為 CLSI 所推薦的標(biāo)準(zhǔn)，在檢測(cè) MRSA時(shí)如果與一些其它方法補(bǔ)充可以不會(huì)有 MRSA 的漏檢。苯唑西林紙片擴(kuò)散法對(duì)于 MRSA 異質(zhì)性耐藥檢測(cè)較為困難，而頭孢西丁能誘導(dǎo) mecA 基因表達(dá) PBP2a，能更好地檢出異質(zhì)性耐藥菌株。

2.2 苯唑西林瓊脂篩選

MH 培養(yǎng)基加 NaCl(40 g/L)加苯唑西林(6 μg/ml)，將菌液(0.5 麥?zhǔn)蠞岫?畫(huà)線在培養(yǎng)皿上 35°C 培養(yǎng) 24 h，只要平皿有菌生長(zhǎng)，即使是一個(gè)菌落也判斷為 MRSA，敏感度為 100%。與常規(guī)方法相比在 MRSA 檢測(cè)上并無(wú)顯著性，但對(duì)于其它葡萄球菌，瓊脂篩選法有較高的陽(yáng)性率，因此尤其適用于多種葡萄球菌中 MRSA 的檢測(cè)。該法操作方法簡(jiǎn)便、實(shí)驗(yàn)成本低，一個(gè)平板可同時(shí)檢測(cè)多個(gè)樣品，檢出率高，較為實(shí)用，可用于 MRSA的常規(guī)檢測(cè)；尤其當(dāng)多種檢測(cè)方法結(jié)果不一致時(shí)，應(yīng)以瓊脂篩選為準(zhǔn)。但是該法耗時(shí)長(zhǎng)，此外 Swenso 等發(fā)現(xiàn)在異質(zhì)耐藥菌株進(jìn)行試驗(yàn)時(shí)該方法敏感性下降，特異性降低且出現(xiàn)邊緣性MIC；Diedere等發(fā)現(xiàn)CHROM瓊脂篩選具有 97.1%的敏感性和 99.2%的特異性，如果篩選周期到由 24 小時(shí)變?yōu)?48 小時(shí)，菌落敏感性將會(huì)增加到 100%。

2.3 乳膠凝集試驗(yàn)

凝集試驗(yàn)是一種快速、操作簡(jiǎn)便的免疫學(xué)診斷方法，在臨床快速 MRSA 診斷方面應(yīng)用廣泛。其原理是抗 PBP2a 單克隆抗體致敏的乳膠顆粒與 MRSA 的膜蛋白提取物作用，如產(chǎn)生肉眼可見(jiàn)的凝集顆粒證實(shí)有PBP2a 存在，判斷其為 MRSA。其它還有一些檢測(cè)存在于細(xì)胞膜內(nèi) PBP2a 的乳膠試劑，這類檢測(cè)需要裂解細(xì)胞。代表的試劑盒包括 PBP2’Test（Oxoid）、MASTALEX -MRSA（Mast）和 MRSAScreen（Denka Seiken）。研究表明該方法的敏感性≥97%[41-43]，而 Datta 等[36]報(bào)道其具有 100%的敏感性和 99.2%的特異性。同時(shí)，該方法具有與 mecA 基因檢測(cè)相關(guān)性好、快速簡(jiǎn)便、特異性強(qiáng)、靈敏度高等特點(diǎn)，且不需特殊儀器和技術(shù)，尤其適合用于 MRSA 早期檢測(cè)，可作為 PCR 法的替代方法；但檢測(cè)成本較高。

2.4 分子生物學(xué)診斷方法

自上世紀(jì)90年代起，分子生物學(xué)方法在微生物檢測(cè)中逐漸取代傳統(tǒng)方法，主要包括PCR、熒光定量PCR與各種新型核酸擴(kuò)增技術(shù)等。與常規(guī)“金標(biāo)準(zhǔn)”方法相比，PCR技術(shù)具有較大優(yōu)勢(shì)。首先，在耗時(shí)方面，由于常規(guī)方法基于細(xì)菌培養(yǎng)，因此增菌以及選擇性培養(yǎng)耗時(shí)可長(zhǎng)達(dá)3天，但PCR由于檢出限低，樣品中微量的菌體足以啟動(dòng)擴(kuò)增反應(yīng)，因此在從樣品處理到培養(yǎng)的時(shí)間可大為縮減。由于PCR具有高特異性，因此以上方法的增菌與細(xì)菌培養(yǎng)（LB培養(yǎng)基）階段，與“金標(biāo)準(zhǔn)”相比，耗時(shí)可降低12-24h。其次，細(xì)菌鑒定操作方面，“金標(biāo)準(zhǔn)”方法在細(xì)菌培養(yǎng)后，常需通過(guò)血漿凝固酶實(shí)驗(yàn)鑒定，而PCR通過(guò)選取特異的分子靶點(diǎn)，結(jié)果特異性高；該方法在鑒定金葡菌特異基因的同時(shí)，以所有葡萄球菌的靶點(diǎn)為內(nèi)參，可信度更高。

再次，PCR方法的高靈敏度和特異性，有助于解決“金標(biāo)準(zhǔn)”方法中假陰性和低敏感度的問(wèn)題。筆者等以orfX為檢測(cè)靶點(diǎn)，建立針對(duì)MRSA的檢測(cè)方法，該方法已被證明是一個(gè)簡(jiǎn)單，快速，特異，敏感的檢測(cè)方法，對(duì)于食品檢測(cè)，醫(yī)院等機(jī)構(gòu)對(duì)MRSA快速鑒定具有重要意義，在未來(lái)發(fā)展中對(duì)簡(jiǎn)化檢測(cè)方法的改進(jìn)具有深遠(yuǎn)的意義。此外，筆者等[44]建立的多重PCR體系，針對(duì)16SrRNA、femA和mecA基因，可用于MRSA檢測(cè)。除具有常規(guī)PCR的優(yōu)點(diǎn)外，多重PCR能在同一次PCR反應(yīng)和凝膠電泳分析中，完成多個(gè)靶基因的檢測(cè)，在簡(jiǎn)便性、耗時(shí)方面具有較大優(yōu)勢(shì)；本實(shí)驗(yàn)建立的多重PCR方法，結(jié)果證實(shí)其能對(duì)葡萄球菌、金葡菌及關(guān)鍵耐藥因子進(jìn)行檢測(cè)與鑒定。該方法特異靈敏、簡(jiǎn)便快捷，同時(shí)具有適應(yīng)面廣，易于推廣和應(yīng)用等優(yōu)點(diǎn)。1995年出現(xiàn)的以標(biāo)記特異性熒光探針為特點(diǎn)的熒光定量PCR技術(shù)，實(shí)行完全閉管式操作，不僅能大大減少擴(kuò)增產(chǎn)物的污染機(jī)會(huì)，提高檢測(cè)的特異性，且可通過(guò)計(jì)算機(jī)自動(dòng)分析對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行精確定量提高檢測(cè)的靈敏度，完全克服了普通PCR的缺點(diǎn)，且該方法操作簡(jiǎn)便迅速，適用于大樣本量的篩查該方法可用于檢測(cè)葡萄球菌及腸毒素。與傳統(tǒng)的培養(yǎng)檢測(cè)技術(shù)相比，分子檢測(cè)技術(shù)能夠?qū)κ称分杏泻ξ⑸飳?shí)現(xiàn)快速、準(zhǔn)確的檢測(cè)；與普通的PCR相比，實(shí)時(shí)熒光定量PCR可以在PCR反應(yīng)過(guò)程中直接檢測(cè)熒光信號(hào)，無(wú)需配膠、電泳等步驟，可以更加快速有效地鑒別出MRSA，且可以對(duì)靶位基因進(jìn)行定量檢測(cè)。Warren等[45]通過(guò)特定目標(biāo)的一種熒光分子信標(biāo)探針與擴(kuò)增產(chǎn)物雜交，用實(shí)時(shí)熒光PCR法直接從鼻咽拭子標(biāo)本中快速檢測(cè)MRSA，其敏感性為91.7％，特異性為93.5％，82.5％能顯示陽(yáng)性，97.1％能顯示陰性，其中拭樣處理和檢測(cè)時(shí)間僅為1.5小時(shí)。

Oh等通過(guò)Xpert MRSA檢測(cè)體系，在2小時(shí)內(nèi)完成MRSA檢測(cè)；Xpert MRSA測(cè)試法是一種快速，敏感，臨床上有用的檢測(cè)方法，利用SCCmec上一段特異性序列，特別適用于早期MRSA的檢測(cè)。Liu等[47]通過(guò)使用一種新的集成微流體系統(tǒng)可以檢測(cè)活MRSA、敏感金葡菌和其它病原體，該微流體系統(tǒng)已被證明具有100％的MRSA檢測(cè)特異性；從樣品預(yù)處理到熒光觀察，可自動(dòng)化在2.5小時(shí)內(nèi)完成。Stenholm等[48]用一種即時(shí)檢測(cè)的雙光子激發(fā)熒光檢測(cè)技術(shù)對(duì)243株MRSA進(jìn)行檢測(cè)，其中99.0％的MRSA真陽(yáng)性樣品所需時(shí)間小于14小時(shí)，該法主要優(yōu)點(diǎn)包括簡(jiǎn)單的檢測(cè)程序，試劑消耗低，以及高流量能力。近年來(lái)有多重新型核酸技術(shù)被報(bào)道，其中環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增（LAMP）技術(shù)是在2000年由Notomi等發(fā)明的一種體外等溫?cái)U(kuò)增特異核酸片段的技術(shù)[49,50]。自問(wèn)世以來(lái)，數(shù)年間已被廣泛應(yīng)用于生物安全、疾病診斷、食品分析及環(huán)境監(jiān)測(cè)等領(lǐng)域。該方法在簡(jiǎn)便、快速、特異性和靈敏度方面具有顯著優(yōu)勢(shì)。LAMP反應(yīng)的靈敏度也極高，其靈敏度可達(dá)常規(guī)PCR的10-100倍（檢出限是常規(guī)PCR的1/100～1/10拷貝數(shù)）。因此，對(duì)細(xì)菌進(jìn)行檢測(cè)時(shí)LAMP法在培養(yǎng)時(shí)間和所需基因拷貝數(shù)等方面具有較大優(yōu)勢(shì)。筆者曾過(guò)對(duì)118株葡萄球菌進(jìn)行16SrRNA、femA和mecA三個(gè)特異性靶點(diǎn)的LAMP檢測(cè)[3]，其中，16SrRNA-LAMP均檢測(cè)為陽(yáng)性，靈敏度與陽(yáng)性預(yù)測(cè)值均為100%；而PCR則只檢測(cè)其中113株葡萄球菌陽(yáng)性，靈敏度與陽(yáng)性預(yù)測(cè)值分別為95.8%與100%。對(duì)65株金葡菌和53株凝固酶陰性葡萄球菌，femA-LAMP的靈敏度、陽(yáng)性預(yù)測(cè)值與陰性預(yù)測(cè)值分別為98.5%、100%與98.1%；而PCR則相應(yīng)為92.3%、100%與91.4%。對(duì)70株甲氧西林耐藥菌和48株敏感菌，mecA-LAMP的靈敏度、陽(yáng)性預(yù)測(cè)值與陰性預(yù)測(cè)值分別為94.3%、100%與92.3%；而PCR則分別為87.1%、100%與84.2%。同時(shí)，筆者利用MRSA中的特異靶點(diǎn)orfX，建立一種針對(duì)MRSA的快速檢測(cè)技術(shù)。通過(guò)對(duì)116株對(duì)照菌株進(jìn)行驗(yàn)證，顯示該技術(shù)的特異性為100%，能有效針對(duì)MRSA進(jìn)行特異檢測(cè)。應(yīng)用該技術(shù)檢測(cè)667株葡萄球菌，包括566株MRSA、25株MSSA、53株MRCNS與23株MSCNS，結(jié)果顯示，靈敏度達(dá)98.4%（557/566），而與之平行對(duì)比的PCR技術(shù)則僅為91.7%（519/566），陽(yáng)性預(yù)測(cè)值與陰性預(yù)測(cè)值分別為100%和92.7%[51]。此外，筆者利用金葡菌中的特異femA基因，建立一種針對(duì)金葡菌的LAMP快速檢測(cè)體系。通過(guò)應(yīng)用于432株金葡菌（118株臨床與314株食源性菌株）的檢測(cè)鑒定，結(jié)果顯示，檢出率為98.4%，檢出限為100 fg DNA/Tube與104CFU/ml[52]。

3 結(jié)論

綜上所述，抗生素濫用是重要的食品安全問(wèn)題，其引起的后果不應(yīng)局限于食物中殘留的微量抗生素，而應(yīng)擴(kuò)展至由其引起的細(xì)菌耐藥性乃至超級(jí)細(xì)菌問(wèn)題。在典型的食源性微生物金葡菌中，耐藥性較為普遍。其中，MRSA 除引起多起食物中毒事件外，同時(shí)也是潛在的超級(jí)細(xì)菌。該類菌株的新型耐藥特點(diǎn)顯示其耐藥性發(fā)展和進(jìn)化可能由大量歷史較久、在臨床已淡出的抗生素在畜牧業(yè)中的濫用影響并決定；但其具體的分子機(jī)制有待進(jìn)一步深入研究。目前，國(guó)內(nèi)外科研工作者已針對(duì) MRSA 菌株的檢測(cè)開(kāi)發(fā)出了許多適用方法，其中LAMP 法由于具有簡(jiǎn)便、快速、特異性強(qiáng)和靈敏度高等優(yōu)勢(shì)，已獲得越來(lái)越多的關(guān)注，顯示出較好的實(shí)際應(yīng)用價(jià)值。

作者：鄧陽(yáng) 劉曉晨 李冰 李琳 徐振波 單位：華南理工大學(xué) 美國(guó)馬里蘭大學(xué)生物醫(yī)學(xué)科學(xué)系